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Augustus 进行基因注释

时间:2020-04-07 09:24:31      阅读:114      评论:0      收藏:0      [点我收藏+]

标签:贝叶斯   ndt   rand   开始   模型   spin   格式   转换   href   

 

目前的从头预测软件大多是基于HMM(隐马尔科夫链)和贝叶斯理论,通过已有物种的注释信息对软件进行训练,从训练结果中去推断一段基因序列中可能的结构,在这方面做的最好的工具是AUGUSTUS它可以仅使用序列信息进行预测,也可以整合EST, cDNA, RNA-seq数据作为先验模型进行预测。

 

安装

具体看看这个http://www.chenlianfu.com/?p=1224

 

 

使用

(1)若存在已经被训练的物种(augustus --species=help查看),则直接使用一下代码进行预测基因,以拟南芥为例:

 1 augustus --speices=arabidopsis test.fa > test.gff 

(2)若不存在被训练过的物种,则需要进行训练

  • 准备训练集和测试集

根据Augutus的官方教程,可靠的基因结构序列的要求如下:

 

a. 提供基因的编码部分,包含上游几KB。通常而言,基因越多,效果越好,至少准备200个基因以上。还得保证这些基因中要有足够多的外显子,这样子才能训练内含子

b. 这些基因的基因结构一定要足够的准确。不过,也不需要百分百的正确,甚至注释都不需要特别的完整,只要保证起始密码子和终止密码子的准确是准确的即可。

c. 需要保证这些基因没有冗余,也就是说不同序列如果有几乎相同的注释后氨基酸序列,那么仅仅取其中一个(AUGUSTUS教程的建议是:保证任意两个基因在氨基酸水平上低于70%的相似度),这一步既可以避免过度拟合现象,也能用于检验预测的准确性

d. 一条序列允许有多个基因,基因可以在正链也可以在负链,但是这些基因间不能有重叠,每个基因只要其中一个转录本,存放格式是GenBank

 

之后随机将注释数据集分成训练集和测试集,为了保证测试集有统计学意义,因此测试集要足够多的基因(100~200个),并且要足够的随机。

基因结构集的可能来源有:

a. Genbank

b. EST/mRNA-seq的可变剪切联配, 如PASA

c. 临近物种蛋白的可变剪切联配,如GeneWise

d. 相关物种的数据

e. 预测基因的迭代训练

 

流程如下

这一部分有时间可以看看

http://www.chenlianfu.com/?p=2307 还有这个https://www.jianshu.com/p/679bd6bb0ea4

(1)格式转换;基于选取物种的GFF3以及ref.fa 文件将其转换为Genbank格式

 1 perl ~/miniconda2/bin/gff2gbSmallDNA.pl ./Spinach_genome/spinach_gene_v1.gff3 ./Spinach_genome/spinach_genome_v1.fa 1000 genes.raw.gb 

(2)尝试训练,捕捉错误;

 1 etraining --species=generic --stopCodonExcludedFromCDS=false genes.raw.gb 2> train.err 

(3)过滤掉可能错误的基因结构

1 cat train.err | perl -pe ‘s/.*in sequence (\S+): .*/$1/‘ >badgenes.lst
2 filterGenes.pl badgenes.lst genes.raw.gb > genes.gb

(4)提取上一步过滤后的genes.db中的蛋白  (其中第4-6步骤,也有人忽视)

1 grep ‘/gene‘ genes.gb |sort |uniq  |sed ‘s/\/gene=//g‘ |sed ‘s/\"//g‘ |awk ‘{print $1}‘ >geneSet.lst
2 python extract_pep.py geneSet.lst Spinach_genome/spinach_pep_v1.fa

(5)将得到的蛋白序列进行建库,自身blastp比对。根据比对结果,如果基因间identity >= 70%,则只保留其中之一,再次得到一个过滤后的gff文件,gene_filter.gff3

1 makeblastdb -in geneSet.lst.fa -dbtype prot -parse_seqids -out geneSet.lst.fa
2 blastp -db geneSet.lst.fa -query geneSet.lst.fa -out geneSet.lst.fa.blastp -evalue 1e-5 -outfmt 6 -num_threads 8
3 python delete_high_identity_gene.py geneSet.lst.fa.blastp Spinach_genome/spinach_gene_v1.gff3

(6)将得到的gene_filter.gff3 转换为genbank 格式文件

1 perl ~/miniconda2/bin/gff2gbSmallDNA.pl  gene_filter.gff3  ./Spinach_genome/spinach_genome_v1.fa 1000 genes.gb.filter

(7)将上一步过滤后的文件随机分成两份,测试集和训练集。其中训练集的数目根据gb的LOCUS数目决定,至少要有200

1 ## 100 为测试集的基因数目,其余为训练集
2 randomSplit.pl genes.gb.filter 100

(8)初始化HMM参数设置(在相应~/minicode/config/species/relative name中形成参数,若之前已经存在该物种名字,则需要删除),并进行训练

1 new_species.pl --species=spinach
2 etraining --species=spinach genes.gb.filter.train

(9)用测试数据集检验预测效果,这里可以比较我们训练的结果,和近缘已训练物种的训练效果

1 augustus --species=spinach genes.gb.filter.test | tee firsttest.out
2 augustus --species=arabidopsis genes.gb.filter.test | tee firsttest_ara.out

在 firsttest.out 的尾部可以查看预测结果的统计,首先需要解释几个统计学概念

  • TP(True Positive): 预测为真,事实为真
  • FP(False Positive): 预测为真,事实为假
  • FN(False Negative): 预测为假,事实为真
  • TN(True Negative): 预测为假,事实为假

基于上述,引出下面两个概念。"sensitivity"等于TP/(TP+FP)(预测到的百分率), 是预测为真且实际为真的占你所有认为是真的比例."specificity"等于TN/(TN+FN)(其中正确的百分率), 是预测为假且实际为假的占你所有认为是假的比例。我们希望在预测中,尽可能地不要发生误判,也就是没有基因的地方不要找出基因,有基因的地方不要漏掉基因。

(10)很有可能的一种情况是,我们第一次的训练结果没有已有训练的效果好,所以我们需要进行循环训练找到最优参数;(运行会非常费时间,而且最终的效果一般只能提高准确度几个百分点,慎重使用)

1 optimize_augustus.pl --species=spinach genes.gb.filter.train

(11)再次进行训练,并检验,进行前后比较

1 etraining --species=spinach genes.gb.filter.train
2 augustus --species=spinach genes.gb.filter.test | tee secondtest.out
  • 如果此时你的gene level的sensitivity还是低于20%说明Trainning set不够大,请添加数据;
  • 如果你获得了满意的Trainning结果,请开始prediction吧

 

下面命令可用于从 firsttest.out 中提取氨基酸序列

sed -n ‘/^#/p‘ firsttest.out | sed -n ‘/start/,/\]/p‘ | sed ‘s/# start gene />/g;s/protein sequence \= \[//g;s/#//g;s/\]//g;s/^\s//g‘ >seq.fa

  

来源:https://www.cnblogs.com/zhanmaomao/p/12359964.html

Augustus 进行基因注释

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原文地址:https://www.cnblogs.com/bio-mary/p/12610996.html

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